ELISA靠洗滌來達到分離游離的和結合的酶標記物的目的。通過洗滌以清除殘留在板孔中沒能與固相抗原或抗體結合的物質(zhì)，以及在反應過程中非特異性地吸附于固相載體的干擾物質(zhì)。恒遠生物為大家總結ELISA試劑盒洗滌的兩大方法。
一、浸泡式
1.吸干或甩干孔內(nèi)反應液；
2.用洗滌液過洗一遍(將洗滌液注滿板孔后，即甩去)；
3.浸泡，即將洗滌液注滿板孔，放置1-2分鐘，間歇搖動，浸泡時間不可隨意縮短；
4.吸干孔內(nèi)液體�？捎盟没蛘婵毡贸槲部伤θヒ后w后在清潔毛巾或吸水紙上拍干；
5.重復操作c和d，洗滌3-4次(或按說明規(guī)定)。在間接法中如本底較高，可增加洗滌次數(shù)或延長浸泡時間。
二、流水沖洗式
初用于小珠載體的洗滌，洗滌液僅為蒸餾水甚至可用自來水。洗滌時附接一特殊裝置，使小珠在流水沖擊下不斷地滾動淋洗，持續(xù)沖洗 2分鐘后，吸干液體，再用蒸餾水浸泡2分鐘，吸干即可。浸泡式猶如盆浴，流水沖洗式則好比淋浴，且也簡便、快速。已有實驗表明，流水沖洗式同樣也適用于微量滴定板的洗滌。洗滌時設法加大水流量或加大水壓，讓水流沖擊板孔表面，洗滌效果更佳。
除了洗滌方式，還有主洗滌參數(shù)、洗滌次數(shù)等在實驗中也是至關重要的，關于洗滌實驗的優(yōu)化方面，我司技術也給大家分析分析：
ELISA試劑盒洗滌參數(shù)：
洗滌量
自動洗板機會分配洗滌液。如果你之遭遇過高背景，那么不要猶豫，將洗滌量調(diào)為高，比包被體積更高。太少的洗滌液會讓一部分分析表面洗滌不到，從而明顯增加背景。所有反應孔的洗滌量必須相同。ELISA板的制造商通常會在試劑盒的使用手冊中列出包被量。行業(yè)中通常使用的包被量是200μl。如果你的試劑盒也是這樣，那么制造商可能會建議使用300μl洗滌液進行洗滌，以便清潔整個反應孔的壁。一般來說，洗滌量越高，則孵育步驟殘留的抗體或抗原量就越少。
洗滌循環(huán)的量
【ELISA試劑盒洗滌】次數(shù)越多，背景越低。然而，太多次的洗滌會降低信號強度，使其難以測定。通常的做法是在每次抗體或抗原孵育后重復洗滌三次。不過，ELISA板的制造商會對洗滌次數(shù)提出建議。一般而言，制造商包被平板需要的洗滌次數(shù)比用戶包被的平板要少。對于用戶包被的ELISA板，必須優(yōu)化洗滌次數(shù)。
控制洗滌量和洗滌次數(shù)的另一種方法是加入過量的洗滌液。一般來說，96孔板的每個孔能容納330至460ul。不過，有些自動化洗板機可設置程序，分配遠遠超出這個量的洗滌液，比如1ml。它是如何做到的呢？其實很簡單，就是在分液的同時打開吸液功能。換句話說，隨著分液器分配更多的液體，抽吸器也將液體吸出。這種技術能增加洗滌量，但不會溢出到其他孔中。
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